復蘇方:法1)從冰箱里取出細胞冷凍保存管,立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2)待凍存管中細胞混合液完全融化后,立即加入1ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合,再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養基的試管中,混合均勻。3)離心收集培養細胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min),移去上清液。4)清洗細胞,充分洗凈殘留凍存液。5)加入適量的新鮮細胞培養基,使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后,將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。6)鏡檢后,研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養。在細胞內外進行雙重保護,較大提高了細胞復蘇存活率。金華正規無血清細胞凍存液直銷廠家
無血清細胞凍存液與含血清細胞凍存液對比:傳統的細胞凍存液是使用培養基、血清和DMSO按照一定的比例混合,其中DMSO的含量是10%,血清的含量是10%,統稱為含血清細胞凍存液。含血清細胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法,如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘,然后移至-20℃冰箱30分鐘,再移至-80℃冰箱保存16-18個小時(或隔夜),較后才移至液氮罐中進行長期的儲存。可見,含血清細胞凍存液凍存細胞時遇到的問題:1.凍存細胞時需現配凍存液(如購買市面上通用的含血清細胞凍存液,此步可省略)。2.需要程序降溫(4℃→-20℃→-80℃→液氮),步驟繁瑣,耗時耗力。3.含血清,細胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風險更高。4.血清批次、品質間差異導致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存,且不能原位(如孔板)凍存。長沙正規無血清細胞凍存液產品介紹無血清細胞凍存液產品性能:凍存液含DMSO、葡萄糖等各種細胞營養成分。
細胞凍存配制含10%DMSO或甘油的細胞凍存液,4℃預冷(新鮮配制的凍存液會產生大量的熱);取對數生長期的細胞,用細胞消化酶將單層生長的細胞消化下來;懸浮細胞則直接將細胞收集到離心管中;離心1200rpm,6min;去除上清液,逐漸加入適量預冷的細胞凍存液,用吸管輕輕吹打使細胞均勻,計數,調節凍存液中的細胞終濃度為5×10e6/ml~1×10e7/ml;將細胞分裝入凍存管中,每管1~1.5ml;在凍存管上標明細胞的名稱、凍存時間及操作人員姓名;凍存:標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min;到達-80℃時,則可迅速放入液氮中。
無血清凍存液使用方法:1、收集懸浮細胞或貼壁細胞,離心去除上清培養液。2、加入適量的細胞凍存液,重懸細胞,調節密度至1-5x10*↑/mL。3、將加有凍存液的細胞懸液分裝至凍存管中。4、將凍存管直接轉移至-80C水箱中冷凍保存。5、儲存條件:2-8C保存,年有效:-20C保存,兩年有效。無血清凍存液注意事項:1、請選擇對數生長期細胞進行凍存。2、凍存液加入細胞后,請盡快放入-80C冰箱凍存。3、本產品凍存細胞可以在-80°C冰箱保存3年以上。4、若需長期凍存細胞,請轉移至液氮罐中貯存。5、凍存液中含DMSO成分,為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套。細胞凍存管一定要保證完全密封,否則在復蘇過程中有可能會炸。
細胞凍存,我們應該注意哪些事項:1、凍存液比例一般是培養基:血清:DMSO=7:2:1或5:4:1;動物種屬的原代細胞凍存液可采用的比例是培養基:血清:DMSO=0:9:1,即直接用血清重懸細胞再加入DMSO,盡管如此,原代細胞的復蘇成活率還是很低。2、有文獻表明,細胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙,因為這一速度可以很好的控制細胞內部晶體的產生。我們實際操作不可能將速度控制的這么精確,目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉入液氮中。無血清凍存液用途:細胞保藏中心,無血清細胞凍存液用于細胞株的長期保存。太原無血清細胞凍存液廠家推薦
無血清細胞凍存液產品性能:通常細胞凍存液的配方是由胎牛血清加上DMSO組成。金華正規無血清細胞凍存液直銷廠家
新常態下細胞凍存指南:細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍速融,實驗證明這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑,這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性,加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外,減少細胞內冰晶的形成,從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復蘇細胞應采用快速融化的方法,這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。典型的細胞凍存液是在生長培養基中加入5%到10%的DMSO和5%到40%的血清,或只是在血清中加入10%的DMSO。目前在有些實驗室中仍然采用這種自制自配的凍存液,優點是成本低,適合自己的細胞。金華正規無血清細胞凍存液直銷廠家